Centrum Innowacji i Transferu Technologii
Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu
Kolegium Rungego
ul. Wojska Polskiego 52
60-627 Poznań
Kolegium Rungego
ul. Wojska Polskiego 52
60-627 Poznań
| OGÓLNA TEMATYKA DZIAŁALNOŚCI NAUKOWO-BADAWCZEJ: ZESPÓŁ FIZJOLOGII I BIOCHEMII ZWIERZĄT
|
KONTAKT DO KATEDRY:
Imię i nazwisko osoby odpowiedzialnej za współpracę: E-mail: pawel.kolodziejski@up.poznan.pl Telefon: 61-848-71-96 Adres: ul. Wolyńska 35, 60-637 Poznań www: www.sites.google.com/view/wmwz-kfbbz-pl/home/projekty-naukowe?authuser=0 |
PROJEKTY REALIZOWANE W CIĄGU OSTATNICH 5 LAT:
|
LP |
TEMAT |
ŹRÓDŁO FINANSOWANIA |
KIEROWNIK PROJEKTU |
E-MAIL DO KIEROWNIKA |
OKRES REALIZACJI |
| 1 |
Wpływ speksyny na profil hormonalny i metaboliczny w mysim i szczurzym modelu cukrzycy typu 2 |
NCN |
dr Paweł Kołodziejski |
2016-06-10 - 2019-06-09 | |
| 2 |
Rola adropiny w regulacji funkcji adipocytów oraz komórek alfa i beta wysp trzustkowych |
NCN |
dr hab. Marek Skrzypski, Prof. UPP |
2017-07-06 - 2022-01-05 | |
| 3 |
Rola neuropeptydu B w regulacji funkcji preadipocytów szczura i świni |
NCN |
dr Tatiana Wojciechowicz |
2017-02-24 - 2021-12-23 | |
| 4 |
Działanie resweratrolu u nieotyłych szczurów z uwarunkowaną genetycznie cukrzycą typu 2 |
NCN |
Dr hab. Katarzyna Szkudelska, Prof. UPP |
2016-07-20 -2020-07-19 | |
| 5 |
Rola mitochondrialnego peptydu MOTS-c w funkcjonowaniu trzustki i tkanki tłuszczowej |
NCN |
Dr hab. Maciej Sassek |
|
2019-07-24 - 2022-07-23 |
| 6 |
Feniksyna jako nowy regulator funkcji komórek alfa i beta trzustki |
NCN |
dr Maria Billert |
|
2018-01-30 - 2021-01-29 |
| 7 |
SARMs jako modulatory funkcji metabolicznych i stresu oksydacyjnego tkanki tłuszczowej i serca w szczurzym modelu otyłości – badania in vitro i in vivo |
NCN |
mgr. inż. Natalia Leciejewska |
2020-06-26 - 2023-06-25 |
|
| 8 |
Wpływ diety wysokotłuszczowej i wysokowęglowodanowej na profil molekularny stanu zapalnego na modelu zwierzęcym otyłości w astmie |
NCN Projekt w konsorcjum z Uniwersytetem Medycznym im Karola Marcinkowskiego w Poznaniu |
dr Dawid Szczepankiewicz |
2020-05-18 - 2024-05-18 |
|
| 9 |
Rola speksyny w funkcjonowaniu endokrynnym trzustki różnych gatunków |
NCN |
Dr hab. Maciej Sassek |
|
2017-09-12 - 2018-09-11 |
| 10 |
Analiza rozwoju sznurów płciowych i kanalików sieci jajnika w aspekcie różnicowania komórek pęcherzykowych i ich relacji z komórkami linii płciowej u kota domowego (Felis silvestris catus |
NCN |
Dr Ewelina Prozorowska |
2021-12-15 - 2022-12-14 |
|
| 11 |
LEAP2 jako modulator metabolizmu tkanki tłuszczowej oraz trzustki w cukrzycy typu 2 |
NCN |
dr Paweł Kołodziejski |
2021-12-27 - 2025-12-26 |
|
| 12 |
Model ex vivo układu podwzgórze-przysadka – alternatywa dla badań in vivo na zwierzętach. Udział feniksyny w modulacji aktywności osi gonadotropowej u owiec |
NCN Projekt w konsorcjum z Instytutem Fizjologii i Żywienia Zwierząt im. Jana Kielanowskiego Polskiej Akademii Nauk |
dr inż. Ewa Pruszyńska-Oszmałek; dr Dawid Szczepankiewicz |
|
2022-02-03 - 2026-02-02 |
ZESPÓŁ FIZJOLOGII I BIOCHEMII ZWIERZĄT
Planowanie i przeprowadzanie badań na zwierzętach laboratoryjnych w warunkach in vivo i in vitro:
- badania nad oddziaływaniem ksenobkiotyków, dodatków paszowych, peptydów i innych substancji biologicznie aktywnych na procesy metaboliczne w żywym organizmie;
- cukrzyce doświadczalne, otyłość, astma, model depresji i manii;
- szerokie spektrum analiz biochemicznych w komórkach i tkankach zwierząt;
- oznaczenia ilościowe hormonów we krwi i tkankach (RIA, EIA etc.);
- analizy z zakresu biologii molekularnej (Western blot, RT-PCR etc.);
- badania na izolowanych komórkach tłuszczowych, mięśniowych, wyspach trzustkowych, hepatocytach;
- wykorzystanie techniki perfuzji trzustki;
- pomiary procesów metabolicznych takich jak: dokomórkowy transport glukozy i kwasów tłuszczowych, lipoliza, lipogeneza
- detekcja metabolitów komórkowych (glicerolu, mleczanu, ATP, cAMP, CO2);
- pomiar potencjału wewnątrzkomórkowej błony mitochondrialnej;
- mikroskopia konfokalna;
- pomiary z wykorzystaniem promieniowania gamma i beta
- praca z liniami komórkowymi (m.in. 3T3-L1, C2C12, INS-1E, HepG2, AML-12, αTC-1 i wiele innych)
- Metody modyfikacji ekspresji genów (wyciszanie etc.)
I. Mikroskopia świetlna (LM)
- Przygotowywanie preparatów histologicznych metodą parafinową
- Metody barwienia: topograficzne, histochemiczne i immunohistochemiczne
- Analizy morfometryczne na preparatach histologicznych
- Analizy trójwymiarowe (3D imaging) odwzorowania struktur mikroskopowych
- Aplikacja metody spektroskopii Ramana w badaniach nad procesem rogowacenia
II. Mikroskopia
- Metody przygotowania prób biologicznych i niebiologicznych do SEM
- Metody przygotowania preparatów z użyciem żywic syntetycznych do TEM
III. Preparatyka mikrokrozyjna
- Metody przygotowania odlewów naczyń krwionośnych do trójwymiarowej wizualizacji angioarchitektury badanych narządów
- Wykonywanie preparatów anatomicznych
- Wykonywanie odlewów naczyń krwionośnych
APARATURA NAUKOWO-BADAWCZA:
PRACOWNIA IZOTOPOWA:
- czytnik promieniowania gamma WIZARD2
- licznik ciekłoscyntylacyjny (beta) Tri-Carb 3110
- system dokumentacji obrazów z możliwością pomiaru chemiluminescencji i fluorescencji Chemidoc Touch Biorad
- czytnik mikropłytek Synergy 2 Biotek
- Real-Time PCR System QuantStudio 12K Flex
- stacja pipetująca 4titude 4LAB
- czytnik fluorescencji Victor 2 Perkin Elmer
- Komory laminarne i inkubatory do hodowli komórkowych
- Microtom Leica
- Kriostat Leica
- Mikroskop konfokalny Zeiss LSM 510 Meta
- Mikroskopy odwrócone
- Homogenizatory nożowe, kulkowe i ultradźwiękowe
- Koncentratory próbek
- Wirówki, termomiksery, termocyklery
DZIAŁALNOŚĆ SZKOLENIOWA:
- szkolenia dla osób uczestniczących w doświadczeniach na zwierzętach
